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免疫熒光技術(shù)是在免疫學(xué)、生物化學(xué)和顯微鏡技術(shù)的基礎上建立起來(lái)的一項技術(shù)。本文將介紹免疫熒光實(shí)驗的新方法;此文將描述在通道載玻片內培養大鼠成纖維細胞(Rat1)的單個(gè)實(shí)驗案例。然后再用AlexaFluor®488鬼筆環(huán)肽染色F-肌動(dòng)蛋白細胞骨架,并用DAPI對細胞核進(jìn)行復染。
細胞免疫熒光實(shí)驗包括四個(gè)主要步驟:
1、培養
• 在無(wú)菌條件下打開(kāi) μ-Slide VI 0.4、ibiTreat (80606) 的包裝,并將其放在 μ-Slide 架 (80003) 上。
• 在每個(gè)通道中加入 30 μl 3x105細胞/ml 大鼠成纖維細胞(Rat1)細胞懸液。如下圖所示或我們的網(wǎng)站上所示,直接將移液器加入通道。
• 用隨附的蓋子蓋住。
• 將載玻片放入培養箱 (37 °C; 5% CO2) 培養并讓細胞附著(zhù) (60 分鐘)。然后用 60 μl 無(wú)細胞培養基填充兩個(gè)通道口。
• 孵育過(guò)夜。
2、固定和透化
在固定和透化過(guò)程中要小心,通道永遠不要變干!通過(guò)用下一個(gè)沖洗剩余的溶液來(lái)交換通道中的液體
固定:
• 使用細胞培養抽吸裝置從所有通道口中吸出培養基。用 Dulbecco PBS 洗滌細胞,方法是將 200 μl 緩慢加入每個(gè)通道的一個(gè)空通道口,并從每個(gè)通道的相對通道口吸出。不要吸出整個(gè)通道體積。
• 用約 100 μl 3.7% 多聚甲醛的 PBS 固定細胞。20 分鐘后,通過(guò)用 200 μl PBS 填充一孔并從另一孔中吸出來(lái)沖洗通道內的液體;確保通道-不干涸。
透化和封閉:
• 如上所述,用 200 μl PBS 再次洗滌細胞。
• 在 PBS 中用 ~100 μl 0.1% Triton® X-100 3-5 分鐘。
• 用 PBS 洗滌細胞。
• 用 ~100 μl 封閉溶液(PBS 中的 1% BSA)20 分鐘。
• 用 PBS 洗滌細胞。
3、染色
• 使用抽吸裝置從通道中取出所有液體。不要讓通道變干。
• 吸液后立即加入 30 μl Alexa Fluor® 488 鬼筆環(huán)肽(在 200 μl PBS 和 1% BSA 中)。用 1 毫升注射器注射溶液會(huì )有所幫助。在室溫下孵育 20 分鐘。
• 用 PBS 洗滌細胞。
• 用 30 μl DAPI (0.1 μg/ml) 3-5 分鐘。
• 用 PBS 清洗細胞并應用 ibidi 封固培養基,直到通道被填滿(mǎn)(約 50 μl)。ibidi 封固劑以甘油為基礎,并含有用于抗褪色的 DABCO。載玻片可存放約4 周。
4、成像
在熒光顯微鏡下選擇適當的濾鏡,也可以使用浸油觀(guān)察細胞。
之所能如此簡(jiǎn)便完成免疫熒光實(shí)驗,是因為這些ibidi培養皿和載玻片的底部為特殊處理的材質(zhì),絕大多數細胞可以直接貼壁生長(cháng),而不需要另外包被。同時(shí),這些耗材的底部薄如蓋玻片,可以直接使用倒置顯微鏡進(jìn)行觀(guān)察,得到高質(zhì)量的成像,適用于顯微鏡比如共聚焦顯微鏡。
實(shí)驗例子:
超分辨率顯微鏡 (STED)觀(guān)察肌動(dòng)蛋白細胞骨架
μ-Slide VI 0.4與超分辨率顯微鏡方法兼容,使用 LifeAct-TagGFP2 蛋白,可以詳細觀(guān)察肌動(dòng)蛋白細胞骨架。在這個(gè)實(shí)驗中,固定的 Rat1 成纖維細胞與 LifeAct-TagGFP2 蛋白一起在 μ-Slide VI 0.4,ibiTreat中孵育。并用 STED 顯微鏡以創(chuàng )建超分辨率圖像。
使用LifeAct-TagGFP2 蛋白對 Rat1 成纖維細胞中的肌動(dòng)蛋白細胞骨架進(jìn)行超分辨率顯微鏡檢查。使用 Plan-Neofluar 100x/1.4 物鏡在 STEDYCON 超分辨率 STED 納米顯微鏡系統(Abberior Instruments GmbH,德國哥廷根)上進(jìn)行顯微鏡檢查。
μ-Slide VI 0.4用于獲取人 BJ 成纖維細胞的共聚焦圖像。用 Drp-1 siRNA 轉染細胞并用 MitoTracker Red 染色以觀(guān)察融合的線(xiàn)粒體。在 ibidi μ-Slide VI 0.4中培養的人 BJ 成纖維細胞的共聚焦顯微鏡圖像。MitoTracker Red(紅色)用于可視化線(xiàn)粒體。